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Biology版 - CRISPR point mutation作出来了
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用CRISPR建stable cell line做CRISPR的同胞们看看这个能够发文章吗
在肿瘤细胞里用CRISPR/HDR技术成功突变一个基因的两个拷贝[求建议] CRISPR 不work 的可能原因
哪位大神用crisper/CAS9 做过single point mutation的KI?现在做CRISPR genome KO screening, 哪个系统最好?
Re: KO求高手指点Cas9 directed Knock-In
Invitrogen Neon electorporation system?大家来谈谈这篇最新的CRISPR文章
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相关话题的讨论汇总
话题: mutation话题: pcr话题: crispr话题: selection话题: marker
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1 (共1页)
m*********D
发帖数: 1727
1
有一个月了,还没有来得及seq.确认。但酶切pattern表明了我拿到了。
本来以为可以发篇方法文章的。但Biotechniques已经出来了。作者里还有认识的老朋
友呢。方法上我们基本是同一个思路和设计,他们的统计数据和我的很接近。他们没有
作point mutation,就是方法上证明可行。基本上,没有selection marker, 拿到
replacement的概率很低。我的统计数据就是transfected cell里面,单copy
replacement的概率是千分之一左右,双copy replacement概率更低。
刚劝说了一个教授放弃他们的point mutation计划(一个博士后的project)。没有
selection marker,基本上指望不大。
生物人太多,竞争太强了。我要不是这个mutation有别的用途,我这几个月时间就是白
花了。
谢谢上次给我出主意的人。我现在也算CRISPR的“专家”了。:)。
h***l
发帖数: 168
2
请问是哪篇bio techniques? selection marker 有时候不好引入啊。

【在 m*********D 的大作中提到】
: 有一个月了,还没有来得及seq.确认。但酶切pattern表明了我拿到了。
: 本来以为可以发篇方法文章的。但Biotechniques已经出来了。作者里还有认识的老朋
: 友呢。方法上我们基本是同一个思路和设计,他们的统计数据和我的很接近。他们没有
: 作point mutation,就是方法上证明可行。基本上,没有selection marker, 拿到
: replacement的概率很低。我的统计数据就是transfected cell里面,单copy
: replacement的概率是千分之一左右,双copy replacement概率更低。
: 刚劝说了一个教授放弃他们的point mutation计划(一个博士后的project)。没有
: selection marker,基本上指望不大。
: 生物人太多,竞争太强了。我要不是这个mutation有别的用途,我这几个月时间就是白
: 花了。

x********e
发帖数: 35261
3
想起我一朋友用CRISPR在果蝇里做SNP的点突变。很快就做出来了,突变率还特别高,
大家都兴奋得不得了。结果后来发现是cas9的line里面带了这个SNP。

【在 m*********D 的大作中提到】
: 有一个月了,还没有来得及seq.确认。但酶切pattern表明了我拿到了。
: 本来以为可以发篇方法文章的。但Biotechniques已经出来了。作者里还有认识的老朋
: 友呢。方法上我们基本是同一个思路和设计,他们的统计数据和我的很接近。他们没有
: 作point mutation,就是方法上证明可行。基本上,没有selection marker, 拿到
: replacement的概率很低。我的统计数据就是transfected cell里面,单copy
: replacement的概率是千分之一左右,双copy replacement概率更低。
: 刚劝说了一个教授放弃他们的point mutation计划(一个博士后的project)。没有
: selection marker,基本上指望不大。
: 生物人太多,竞争太强了。我要不是这个mutation有别的用途,我这几个月时间就是白
: 花了。

m*********D
发帖数: 1727
4
仔细看了一下,是2014的--precise gene deletion and replacement using the
CRISPR/Ca9 system in human cells。

【在 h***l 的大作中提到】
: 请问是哪篇bio techniques? selection marker 有时候不好引入啊。
m*********D
发帖数: 1727
5
嘿嘿,你的bio论坛还没建起来呀?:)。你的能量真让我佩服,这么多论坛主题度有
你的身影。
反正是不容易。我这是给实验室的学生打基础的。游乐这些mutants,他们可以作自己
的research project。而我还得打酱油。

【在 x********e 的大作中提到】
: 想起我一朋友用CRISPR在果蝇里做SNP的点突变。很快就做出来了,突变率还特别高,
: 大家都兴奋得不得了。结果后来发现是cas9的line里面带了这个SNP。

x********e
发帖数: 35261
6
你用了repair template吗

【在 m*********D 的大作中提到】
: 嘿嘿,你的bio论坛还没建起来呀?:)。你的能量真让我佩服,这么多论坛主题度有
: 你的身影。
: 反正是不容易。我这是给实验室的学生打基础的。游乐这些mutants,他们可以作自己
: 的research project。而我还得打酱油。

r******g
发帖数: 600
7
楼主,问个naive question
你做point mutation 用什么办法select呢?
用的endonuclease来select吗?
成功率有多少?
m*********D
发帖数: 1727
8
当然。

【在 x********e 的大作中提到】
: 你用了repair template吗
m*********D
发帖数: 1727
9
我能想出来的就是IRES接G418一类的。这就搞掉/改变了3-UTR一类的。不知道一个G418
的expression casseette能不能插到intron里。
Biotech的文章用的是GFP fusion.我用的是mutant的特性来select。

【在 r******g 的大作中提到】
: 楼主,问个naive question
: 你做point mutation 用什么办法select呢?
: 用的endonuclease来select吗?
: 成功率有多少?

Z**********g
发帖数: 222
10
最近不是出来两篇Nat Biotech的文章吗,说是用小分子抑制NHEJ可明显增强HDR效率。
不知效果如何。
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h****a
发帖数: 65
11
我是新手,正准备做crispr point mutant, 很多问题想请教
1. Crispr载体选择, px330, px335(nickase), px459(puro+), px462(nickase,
puro+)
Nickase的系列在做KO的时候效率会高些,不知道做knock-in mutation哪种效率更高?
你所说的selection marker是crispr载体上带的selection marker(eg.
Puro+), 还是donor上带的selection marker? 我准备用ssDNA做donor, 做点突变的
时候好像也不方便在donor上引入selection marker
2. 你是在donor 上引入酶切位点(通过silence mutation), 然后PCR酶切鉴定吗?
3. 一般knock-in mutation挑克隆都挑一百个克隆以上,具体操作的时候,是不是
在大板上有单克隆后,转96孔板里面,然后duplicate, 其中一板用来做PCR鉴定?做
PCR鉴定的模板是96孔板里面的细胞提取的genomic DNA吗?怎样快速的做从单克隆到
PCR鉴定这一步?
4. 你所说的transfected cells的单copy 的replacement是千分之一,那你在有
selection marker的情况下,单克隆能拿到heterozygous point mution的效率是多高
? Homozygous的效率又是多高呢?挑多少克隆最后能拿到homozygous?
对crispr做mutation实在是太新手了,希望你能帮助解答疑问,不胜感激啊!!!
m*********D
发帖数: 1727
12
1. Crispr载体选择, px330, px335(nickase), px459(puro+), px462(nickase,
puro+)
Nickase的系列在做KO的时候效率会高些,不知道做knock-in mutation哪种效率更高?
你所说的selection marker是crispr载体上带的selection marker(eg.
Puro+), 还是donor上带的selection marker? 我准备用ssDNA做donor, 做点突变的
时候好像也不方便在donor上引入selection marker
**我用的459,主要是要它的puro-selection。这个是筛选transfected cells的。也可
以用带GFP的vector,作cell sorting. 我原文说的selection和这个无关,是指有HDR发
生后的筛选。是,这个selection marker是一个头疼事,我也不太熟悉。
2. 你是在donor 上引入酶切位点(通过silence mutation), 然后PCR酶切鉴定吗?
**是,PCR后梅切。但没有silence mutation.我需要只改变一个AA。
3. 一般knock-in mutation挑克隆都挑一百个克隆以上,具体操作的时候,是不是
在大板上有单克隆后,转96孔板里面,然后duplicate, 其中一板用来做PCR鉴定?做
PCR鉴定的模板是96孔板里面的细胞提取的genomic DNA吗?怎样快速的做从单克隆到
PCR鉴定这一步?
**基本差不多。我用12-well plate,1 well来体genomic DNA.
4. 你所说的transfected cells的单copy 的replacement是千分之一,那你在有
selection marker的情况下,单克隆能拿到heterozygous point mution的效率是多高
? Homozygous的效率又是多高呢?挑多少克隆最后能拿到homozygous?
对crispr做mutation实在是太新手了,希望你能帮助解答疑问,不胜感激啊!!!
**我原文说了,没有selection,heterozygous point mutation的效率在千分之一以下
。homozygous更低。有筛选,效率就高多了。

吗?

【在 h****a 的大作中提到】
: 我是新手,正准备做crispr point mutant, 很多问题想请教
: 1. Crispr载体选择, px330, px335(nickase), px459(puro+), px462(nickase,
: puro+)
: Nickase的系列在做KO的时候效率会高些,不知道做knock-in mutation哪种效率更高?
: 你所说的selection marker是crispr载体上带的selection marker(eg.
: Puro+), 还是donor上带的selection marker? 我准备用ssDNA做donor, 做点突变的
: 时候好像也不方便在donor上引入selection marker
: 2. 你是在donor 上引入酶切位点(通过silence mutation), 然后PCR酶切鉴定吗?
: 3. 一般knock-in mutation挑克隆都挑一百个克隆以上,具体操作的时候,是不是
: 在大板上有单克隆后,转96孔板里面,然后duplicate, 其中一板用来做PCR鉴定?做

m*********D
发帖数: 1727
13
还没看到呢。谢谢提醒。

【在 Z**********g 的大作中提到】
: 最近不是出来两篇Nat Biotech的文章吗,说是用小分子抑制NHEJ可明显增强HDR效率。
: 不知效果如何。

h****a
发帖数: 65
14
太谢谢你的回复了,明白了很多问题,谢谢!
j******i
发帖数: 939
15
那篇Nature biotech SCR7有谁可以重复出来吗 我用ZFN测试效果不大啊
L*****e
发帖数: 288
16
同问~
这个SCR7的原始cell paper都有问题,目前也没有人能重复出来。
至于在CRISPR/CAS9效率上,有人尝试成功过吗?

【在 j******i 的大作中提到】
: 那篇Nature biotech SCR7有谁可以重复出来吗 我用ZFN测试效果不大啊
d*********s
发帖数: 7
17
点突变测序验证了吗?我正开始作。可以建议doner上怎么引入selection marker吗?
谢谢!

吗?

【在 m*********D 的大作中提到】
: 1. Crispr载体选择, px330, px335(nickase), px459(puro+), px462(nickase,
: puro+)
: Nickase的系列在做KO的时候效率会高些,不知道做knock-in mutation哪种效率更高?
: 你所说的selection marker是crispr载体上带的selection marker(eg.
: Puro+), 还是donor上带的selection marker? 我准备用ssDNA做donor, 做点突变的
: 时候好像也不方便在donor上引入selection marker
: **我用的459,主要是要它的puro-selection。这个是筛选transfected cells的。也可
: 以用带GFP的vector,作cell sorting. 我原文说的selection和这个无关,是指有HDR发
: 生后的筛选。是,这个selection marker是一个头疼事,我也不太熟悉。
: 2. 你是在donor 上引入酶切位点(通过silence mutation), 然后PCR酶切鉴定吗?

d*******3
发帖数: 8598
18
路过,效率这么低?
嘀咕
m*********D
发帖数: 1727
19
先道歉--我上面回答网友的havala的第二个问题时搞错了:
”2. 你是在donor 上引入酶切位点(通过silence mutation), 然后PCR酶切鉴定
吗?
**是,PCR后梅切。但没有silence mutation.我需要只改变一个AA。“
我理解silence mutation错了。是,我在donor上通过silence mutation引入两个酶且
位点,然后用这两个酶作geno-typing的。大约是10M细胞,lipofectamine3000作
transfection,三天的puromycin sellection,除掉non-transfected的细胞。约有1%的
细胞能survive,也就是100,000细胞。我用mutant的phenotype作下一步筛选,就是
mutant在一种特殊medium里可以生长,但wild-type不能。这个筛选了三个礼拜后,大
约拿到100 colonies.这其中约25%为double-replacement,50%为single-replacement,
还有约25%在酶切上看不出来,也没有sequencing它们,所以不知具体原因。Double-或
single-replacement mutant里面挑出来一部分作了sequence,证实了mutation.
希望我的经验多大家有帮助。

【在 d*********s 的大作中提到】
: 点突变测序验证了吗?我正开始作。可以建议doner上怎么引入selection marker吗?
: 谢谢!
:
: 吗?

d*********s
发帖数: 7
20
非常感谢! 你用了一个还是两个gRNA. Biotechnology paper用了两个.

replacement,

【在 m*********D 的大作中提到】
: 先道歉--我上面回答网友的havala的第二个问题时搞错了:
: ”2. 你是在donor 上引入酶切位点(通过silence mutation), 然后PCR酶切鉴定
: 吗?
: **是,PCR后梅切。但没有silence mutation.我需要只改变一个AA。“
: 我理解silence mutation错了。是,我在donor上通过silence mutation引入两个酶且
: 位点,然后用这两个酶作geno-typing的。大约是10M细胞,lipofectamine3000作
: transfection,三天的puromycin sellection,除掉non-transfected的细胞。约有1%的
: 细胞能survive,也就是100,000细胞。我用mutant的phenotype作下一步筛选,就是
: mutant在一种特殊medium里可以生长,但wild-type不能。这个筛选了三个礼拜后,大
: 约拿到100 colonies.这其中约25%为double-replacement,50%为single-replacement,

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m*********D
发帖数: 1727
21
我也用了两个。当时的想法很简单:1。不准备测guide RNA的效率,两个里有一个work
就可以了;2。两个guide RNA可以删掉一段很重要的序列,没有这个,细胞无论有没有
HDR,都不能生存,有利我拿到mutant.当然,我那个phenotype筛选可能是最有用的。
我不在乎off-target.我当时觉得,我要能拿到多个mutant,和stable cell line一样,
就五所谓了。我可以比较不同克隆来消除off-target的影响。

【在 d*********s 的大作中提到】
: 非常感谢! 你用了一个还是两个gRNA. Biotechnology paper用了两个.
:
: replacement,

d*********s
发帖数: 7
22
这么说,你设计两个px459载体(每个有一个gRNA)和doner一起转到细胞裏。是吗?
这个贴会让很多人受益。

work

【在 m*********D 的大作中提到】
: 我也用了两个。当时的想法很简单:1。不准备测guide RNA的效率,两个里有一个work
: 就可以了;2。两个guide RNA可以删掉一段很重要的序列,没有这个,细胞无论有没有
: HDR,都不能生存,有利我拿到mutant.当然,我那个phenotype筛选可能是最有用的。
: 我不在乎off-target.我当时觉得,我要能拿到多个mutant,和stable cell line一样,
: 就五所谓了。我可以比较不同克隆来消除off-target的影响。

m*********D
发帖数: 1727
23
是。从single-replacement的“Wildtype"copy情况看,两个guide sequences都起了作
用。之所以加引号,是因为没有真正的wildtype,两个dsb上独有indels.
本意是让想用CRISPR作point-mutation的注意risk,没有筛选的情况下概率太小了一些
。我自己的概率是1 out of 1000左右呢。我看了biotechnique的那篇文章,也差不多
。所以,提醒一下。

【在 d*********s 的大作中提到】
: 这么说,你设计两个px459载体(每个有一个gRNA)和doner一起转到细胞裏。是吗?
: 这个贴会让很多人受益。
:
: work

p******b
发帖数: 379
24
您好, 请问您PCR之后是直接酶切鉴定还是说把PCR产物纯化之后再酶切? 我也打算做
类似的实验, 考虑到要鉴定的克隆数量比较多, 如果需要纯化pcr产物再酶切的话,
工作量就大了很多, 谢谢
m*********D
发帖数: 1727
25
粗筛的时候,不用纯化。后面sequencing,我倒是从gel纯化酶切或没有切的条带。没
有酶切的条带(non-HDR)往往不纯,我有两个酶切点,倒是帮了点忙。
我粗筛是用genomic DNA--PCR。细筛和sequencing,我用得mRNA/cDNA--PCR.



【在 p******b 的大作中提到】
: 您好, 请问您PCR之后是直接酶切鉴定还是说把PCR产物纯化之后再酶切? 我也打算做
: 类似的实验, 考虑到要鉴定的克隆数量比较多, 如果需要纯化pcr产物再酶切的话,
: 工作量就大了很多, 谢谢

p******b
发帖数: 379
26
谢谢您, 不纯化的话, 酶切体系是怎么样的呢? PCR的buffer会影响酶切吗?
p******b
发帖数: 379
27
谢谢您, 不纯化的话, 酶切体系是怎么样的呢? PCR的buffer会影响酶切吗?
p******b
发帖数: 379
28
谢谢您, 不纯化的话, 酶切体系是怎么样的呢? PCR的buffer会影响酶切吗?
m*********D
发帖数: 1727
29
我用Q5作PCR,NEB的Cutsmart buffer作我的酶切。5 ulPCR到20 ul digestion。你要担
心这个,可以少用点PCR,2 ul应该可以。现在的gel拍片都可以enhance,所以,DNA量
少一点不会是问题。

【在 p******b 的大作中提到】
: 谢谢您, 不纯化的话, 酶切体系是怎么样的呢? PCR的buffer会影响酶切吗?
p******b
发帖数: 379
30
好的, 谢谢老大!
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o**4
发帖数: 35028
31
我的donar上没有筛选标志,也想用crispr跟ssODN做knockin,按照你说的效率极低,
heterozygous的效率都只有千分之一,那homozygous是不是没戏了?
要是你会挑多少克隆试试呢?
非常感谢。

【在 m*********D 的大作中提到】
: 我用Q5作PCR,NEB的Cutsmart buffer作我的酶切。5 ulPCR到20 ul digestion。你要担
: 心这个,可以少用点PCR,2 ul应该可以。现在的gel拍片都可以enhance,所以,DNA量
: 少一点不会是问题。

o**4
发帖数: 35028
32
这个效率好低啊,
千分之一不到,看样子难道要挑1000个以上的克隆吗?

replacement,

【在 m*********D 的大作中提到】
: 先道歉--我上面回答网友的havala的第二个问题时搞错了:
: ”2. 你是在donor 上引入酶切位点(通过silence mutation), 然后PCR酶切鉴定
: 吗?
: **是,PCR后梅切。但没有silence mutation.我需要只改变一个AA。“
: 我理解silence mutation错了。是,我在donor上通过silence mutation引入两个酶且
: 位点,然后用这两个酶作geno-typing的。大约是10M细胞,lipofectamine3000作
: transfection,三天的puromycin sellection,除掉non-transfected的细胞。约有1%的
: 细胞能survive,也就是100,000细胞。我用mutant的phenotype作下一步筛选,就是
: mutant在一种特殊medium里可以生长,但wild-type不能。这个筛选了三个礼拜后,大
: 约拿到100 colonies.这其中约25%为double-replacement,50%为single-replacement,

m*********D
发帖数: 1727
33
你这样的问题我已经碰到很多人问了。我只能说不容易。我用的donor
不是ssDNA,但怎么克隆一个selection marker进去,又不影响感兴趣基因的splicing,
我还没有想出办法。除非你的突变点靠近后面的UTR,而UTR又比较小,你才有可能加在
你的基因后面。
按我作high-through put的思维,你最好作dilution method,一个well里平均放100个
细胞,然后duplicate每个well, 一个提DNA,PCR,genotyping。再把阳性的well细胞(
duplicate)dilute到single细胞per well,在genotype。这样,你一百个well/PCR能覆
盖10000个单细胞,还没有,就该放弃了。

【在 o**4 的大作中提到】
: 这个效率好低啊,
: 千分之一不到,看样子难道要挑1000个以上的克隆吗?
:
: replacement,

o**4
发帖数: 35028
34
这个想法非常好,非常感谢,
我好好想想吧,感觉这个方法可行。

【在 m*********D 的大作中提到】
: 你这样的问题我已经碰到很多人问了。我只能说不容易。我用的donor
: 不是ssDNA,但怎么克隆一个selection marker进去,又不影响感兴趣基因的splicing,
: 我还没有想出办法。除非你的突变点靠近后面的UTR,而UTR又比较小,你才有可能加在
: 你的基因后面。
: 按我作high-through put的思维,你最好作dilution method,一个well里平均放100个
: 细胞,然后duplicate每个well, 一个提DNA,PCR,genotyping。再把阳性的well细胞(
: duplicate)dilute到single细胞per well,在genotype。这样,你一百个well/PCR能覆
: 盖10000个单细胞,还没有,就该放弃了。

o**4
发帖数: 35028
35
请问一下你的donor vector咋设计的呢?是ssODN吗?用了多长的homologous arm呢?

【在 m*********D 的大作中提到】
: 你这样的问题我已经碰到很多人问了。我只能说不容易。我用的donor
: 不是ssDNA,但怎么克隆一个selection marker进去,又不影响感兴趣基因的splicing,
: 我还没有想出办法。除非你的突变点靠近后面的UTR,而UTR又比较小,你才有可能加在
: 你的基因后面。
: 按我作high-through put的思维,你最好作dilution method,一个well里平均放100个
: 细胞,然后duplicate每个well, 一个提DNA,PCR,genotyping。再把阳性的well细胞(
: duplicate)dilute到single细胞per well,在genotype。这样,你一百个well/PCR能覆
: 盖10000个单细胞,还没有,就该放弃了。

s********r
发帖数: 312
36
用loxp带抗性基因,放到mutation位点附近的intron里去不就可以了。
d*********s
发帖数: 7
37
好主意。我是外行。 请介绍怎么避免loxp和抗性基因被spliced out. 抗性基因在
intron怎么被表达?

【在 s********r 的大作中提到】
: 用loxp带抗性基因,放到mutation位点附近的intron里去不就可以了。
m*********D
发帖数: 1727
38
我克隆到质粒里面的。一边一个1。2Kb的arm,中间是70bp的mutation region,正好两个
新的酶位点连接,作克隆用。

【在 o**4 的大作中提到】
: 请问一下你的donor vector咋设计的呢?是ssODN吗?用了多长的homologous arm呢?
m*********D
发帖数: 1727
39
其实,如果这个selection marker expression cassette不影响intron/exon splicing
,切不切出来都无所谓的。如果影响,一个essential gene就不可能了。我这次作的一
个基因就是cell growth essential的。

【在 s********r 的大作中提到】
: 用loxp带抗性基因,放到mutation位点附近的intron里去不就可以了。
b****r
发帖数: 17995
40
对CRISPR 的细节不清楚,只是想了解下,理论上你这个点突变的方法(或者其他已有
的点突变方法)有没有可能做到很高的效率,比如80%之类的?或者哪怕是30-40%?

【在 m*********D 的大作中提到】
: 你这样的问题我已经碰到很多人问了。我只能说不容易。我用的donor
: 不是ssDNA,但怎么克隆一个selection marker进去,又不影响感兴趣基因的splicing,
: 我还没有想出办法。除非你的突变点靠近后面的UTR,而UTR又比较小,你才有可能加在
: 你的基因后面。
: 按我作high-through put的思维,你最好作dilution method,一个well里平均放100个
: 细胞,然后duplicate每个well, 一个提DNA,PCR,genotyping。再把阳性的well细胞(
: duplicate)dilute到single细胞per well,在genotype。这样,你一百个well/PCR能覆
: 盖10000个单细胞,还没有,就该放弃了。

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话题: mutation话题: pcr话题: crispr话题: selection话题: marker